一.细胞复苏
1、提前准备完全培养基并预热至37℃（可以放至在水浴或培养箱中进行预热，需要多少预热多少，反复预热会导致培养基失活）；用清洗洁净的烧杯或其他合适容器装有适量超纯水，然后放入37-38℃水浴锅中预热至37℃（至少需30min）；把所需耗材和其他物品放置于超净工作台中紫外照射灭菌；
2、提前查询所取冻存管的存放位置，把整个存储架子提起，为了降低复温对其它细胞的影响，可把该存储架子放置于装有液氮的泡沫盒中，快速（存储架离开液氮罐的时间不要超过1分钟，否则其余细胞容易复温死亡，冻存管子的液氮会气化爆炸）从液氮罐中取出冻存管并放置于装有液氮的保温杯中(必须用用洁净镊子取出冻存管，以免冻伤手)，立即把存储架回液氮罐；用镊子把刚才置于保温杯的冻存管取出，并立即（不要耽搁）放入上述准备好的水浴中（放入之前快速检查盖子是否拧紧，盖子切勿没入水中，以免进水污染），用镊子镊好冻存管，快速沿着容器内壁转圈，细胞未冻融时（1min内）切勿取出观察，细胞冻融时间一般为1-2 min，如果超过2min仍未冻融，应弃用该管细胞，冻融后立即用70%酒精消毒该冻存管，然后立即放入超净工作台中；
3、打开冻存管盖，用移液管吹打细胞3次，然后立即把细胞转移至提前准备的装有5-10ml预热的完全培养基的15ml离心管中；
4、离心，小心移除上清；
5、加入5ml预热完全培养基，吹打重悬细胞，然后把细胞悬液转移至T25培养瓶中，并放入二氧化碳培养箱（5% CO2, 37℃）中培养；
6、第二天观察细胞的贴壁情况，并进行换液。
注意事项
细胞复苏操作要求快速，否则细胞容易在冻融过程中产生冰晶，从而导致细胞死亡，所以必须提前准备好所需的培养基、培养耗材和其他所需物品，绝对不允许临时准备；
2.在解冻细胞前，必须把超净工作台准备至工作状态，提前准备装有5-10ml预热的完全培养基的15ml离心管；
3.为了降低复温对其它细胞的影响，可把该存储架子放置于装有液氮的泡沫盒中；
4.存储架离开液氮罐的时间一般不要超过1分钟，否则其余细胞容易复温死亡，冻存管子的液氮气化爆炸；
5.放入之前快速检查盖子是否拧紧，盖子切勿没入水中，以免进水污染；
6.细胞未冻融时（1min内）切勿取出观察；
7.根据复苏细胞的大小选择合适的离心速度和时间，一般不超过1000RPM,10min；
8.复苏后的第二天必须要进行换液（加入培养基的量根据细胞的密度和生长速度），以降低冻存保护剂DMSO的影响；
9.离心速度和时间依据具体细胞决定；
10.上述是以T25培养瓶为例，具体选用何种培养器皿取决于细胞生长密度需求（启动正常生长所需的密度）。
二.细胞换液培养
1、全量换液：把所有的旧培养液移除，加入新的培养液（加入培养基的量根据细胞的密度和生长速度）；
2、半量换液：把旧培养液移至15ml离心管中，然后在培养器皿中加入适量新培养基（避免细胞离开培养液太久），把装有旧培养液的离心管进行离心（1000RPM, 10min），离心后取适量旧培养上清至培养器皿中。
注意事项
1.全量换液适合于生长较快的肿瘤细胞，因为这些细胞可在短期内分泌足够的因子来支撑其生长；
2.半量换液主要适合于生长较慢的原代细胞和干细胞，这些细胞很难在短期内分泌足够的因子来支撑其生长，旧培养液中恰好含有这些因子；
3.新旧培养液的配比取决于细胞的密度和生长速度及其自身的特性，请参照具体细胞的培养建议，一般为3:1（新：旧）；
4.如果细胞发生发生污染，切勿进行半量换液。
三.细胞传代培养
1、当细胞密度达到其生长密度极限时（一般肿瘤细胞为80-100%，原代细胞和干细胞为80-90%，有些细胞为40-50%，熟知所养细胞的生长密度极限），移除旧培养液；
2、用PBS洗涤两次（旧培养中的钙离子会抑制胰酶的活性），加入1ml胰酶消化液（以T25培养瓶为例），立即盖好盖子，把培养瓶置于倒置显微镜下观察，如大部分细胞变圆，立即移除胰酶消化液（如大部分细胞漂起，可不移除胰酶消化液），加入5ml预热完全培养基，用吸管取培养液吹打瓶壁细胞，使其脱离瓶壁形成单细胞悬液，离心，小心移除上清；
3、加入5ml预热完全培养基，吹打重悬细胞用细胞计数板在显微镜下计算细胞数，分装入T25培养瓶中，添加基至总体积为5ml，置于37℃、5%CO2培养箱中培养；传代1次。
注意事项
1.熟知所养细胞的生长密度极限；
2.第一次进行所养细胞传代时，消化时必须把培养瓶置于倒置显微镜下观察，并记录所需时间，下次按照该时间执行即可；
3.进行细胞传代时必须结合考虑细胞生长密度需求（启动正常生长所需的密度）和实际的工作需求，在满足细胞生长密度需求的前提下，需要多少瓶就传多少瓶，降低工作强度和试剂耗材消耗；
4.离心速度和时间依据具体细胞决定。
四.细胞冻存保种
1、提前配制冻存液：用血清或完全培养基配制5-10%DMSO（根据具体细胞决定）冻存液；
2、消化收取细胞：当细胞密度即将达到其生长密度极限时进行换液，第二天，移除旧培养液，用PBS洗涤两次（旧培养中的钙离子会抑制胰酶的活性），加入1ml胰酶消化液（以T25培养瓶为例），立即盖好盖子，把培养瓶置于倒置显微镜下观察，如大部分细胞变圆，立即移除胰酶消化液（如大部分细胞飘起，可不移除胰酶消化液），加入5ml预热完全培养基，用吸管取培养液吹打瓶壁细胞，使其脱离瓶壁形成单细胞悬液，离心，小心移除上清；
3、加入适量（消化前预估细胞的数量，1-2*10E6/ml冻存液）冻存液并吹打混匀，分装至冻存管中，标记冻存细胞的名称、冷冻日期、操作者姓名拼音简写，然后放入梯度降温盒（提前复温至室温），置于-80℃过夜，次晨置于液氮罐中保存。
注意事项
1.密切观察细胞的生长密度，当细胞密度即将达到其生长密度极限时进行换液，以便第二天进行保种；
2.消化前进行冻存液配制，切勿用培养基和血清重悬细胞后再加入DMSO，这样会导致局部高浓度的DMSO对细胞产生损伤；
3.消化前预估细胞的数量，加入适量冻存液，以使细胞密度为1-2*10E6/ml，密度过高会导致冻存保护液不足，密度过低会导致冻存液对细胞有毒性；
4.梯度降温盒必须提前复温至室温，切勿从-80℃取出即可使用，这样会导致细胞全部死亡；
5.离心速度和时间依据具体细胞决定。
问答环节
问
细胞体内外培养的差别是什么？
答：细胞离体后，失去了神经体液的调节和细胞间的相互影响，生活在缺乏动态平衡相对稳定环境中，日久天长，易发生如下变化：分化现象减弱；形态功能趋于单一化或生存一定时间后衰退死亡；或发生转化获得不死性，变成可无限生长的连续细胞系或恶性细胞系。因此，培养中的细胞可视为一种在特定的条件下的细胞群体，它们既保持着与体内细胞相同的基本结构和功能，也有一些不同于体内细胞的性状。实际上从细胞一旦被置于体外培养后，这种差异就开始发生了。
问
什么是无血清培养基？与普通培养基有什么区别？
答：无血清培养基(serum free medium,SFM):是不需要添加血清就可以维持细胞在体外较长时间生长繁殖的合成培养基。但是它们可能包含个别蛋白或大量蛋白组分。基本成分为基础培养基及添加组分两大部分。添加组分可能包括纤连蛋白、层粘连蛋白等贴壁因子、胰岛素、转铁蛋白、硒等。
问
细胞培养基偶然被冻，可否继续使用？
答：如果细胞培养基偶然被冻，您应该自然溶解培养基并观察是否有沉淀产生。如果没有沉淀产生，培养基可以正常使用，如果出现沉淀，只能丢弃这些培养基。
问
培养基及其它添加物和试剂可反复冻融吗？
答：大部分添加物和试剂最多可以冻融3次，如果次数过多会将使含有的蛋发生降解和沉淀，这将会影响它的性能。
问
液体培养基的保存是冷藏好？还是冷冻好？
答：要冷藏！！通常液体培养基在冷藏条件下可存放6个月到一年。
问
低血清培养基能用肉眼判断其pH值吗？
答：低血清培养基中酚红的含量与普通培养基中的酚红含量不同，不能通过肉眼观察或通过经验来判定pH值，建议使用pH计进行测定。
转自：“MDL科研助手”微信公众号
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