谷粉学术 谷粉学术 2022-05-07 08:19
5月5日，芝加哥大学何川，同济大学高绍荣及高亚威共同通讯在Science 在线发表题为“FTO mediates LINE1 m6A demethylation and chromatin regulation in mESCs and mouse development”的研究论文，该研究展示了 FTO 介导小鼠胚胎干细胞 (mESCs) 中长散在的 element-1 (LINE1) RNA 的 m6A 去甲基化，调节 LINE1 RNA 丰度和局部染色质状态，进而调节含有 LINE1 的基因的转录。
FTO 介导的 LINE1 RNA m6A 去甲基化也在小鼠卵母细胞和胚胎发育过程中塑造染色质状态和基因表达方面发挥调节作用。总之，该研究结果表明 FTO 对哺乳动物的 LINE1 RNA m6A 去甲基化具有广泛的影响。
N6-甲基腺嘌呤（m6A）是真核生物mRNA内部最常见和研究最为广泛的修饰，受“书写”蛋白（METTL3/METTL14复合体），“擦除”蛋白（FTO和ALKBH5）调控并经“阅读”蛋白（YTH家族蛋白等）实现功能。m6A对于mRNA的命运调控影响重大，参与剪接、转运、降解、翻译、与相分离等过程的调控；影响了个体发育和分化等生命过程，并被发现在多种疾病特别是癌症和免疫类疾病中发挥重要作用。2020年何川教授、同济大学高亚威教授和中科院基因组所韩大力教授团队合作报道了染色质相关RNAs（chromatin associate RNA，caRNAs）上m6A对转录和染色质状态的调控【1】，m6A在细胞核内的重要功能、特别是对于染色质和转录效率的调控也引起了其它科研团队的广泛关注【2-4】。但m6A擦除蛋白介导的动态去甲基化在这一调控中的作用，以及其在哺乳动物发育过程中的功能仍缺少深入研究。
FTO是首个被鉴定的RNA去甲基化酶，2011年何川教授报道FTO可以擦除mRNA内部的m6A，由此开创并引发表观转录组学/RNA表观遗传学（Epitranscriptomics/RNA epigenetics）的研究热潮。FTO与哺乳动物发育和多种人类疾病相关， Fto敲除的小鼠存在发育与代谢方面的严重缺陷。近年来，对于FTO介导的mRNA去甲基化研究主要集中在人类癌症细胞中：FTO在特定癌症细胞中可以擦除关键癌基因或抑癌基因mRNA内部的m6A并调控癌症发生发展【5】。与m6A碱基部分具有相同结构域的m6Am（主要位于部分mRNA 端帽邻位，含量约为mRNA内部m6A的1/10-1/30）也被报道为FTO的底物，但其生物学功能仍存在争议。与m6A甲基转移酶Mettl3敲除导致小鼠早期胚胎死亡不同， m6Am相关甲基转移酶的敲除对于小鼠的发育和生殖没有显著影响。美国芝加哥大学何川教授和同济大学高亚威/高绍荣教授团队在研究中发现Fto敲除的杂合子小鼠产生纯合敲除后代比例偏低，并且纯合敲除的雌性小鼠无法产生健康存活的后代，提示小鼠的FTO蛋白可能对于生殖发育等过程非常重要，而多个组织和细胞系的研究证据提示FTO影响生殖发育的主要生理学底物可能是核内RNA的m6A。
在最新这项研究中，研究团队利用Fto敲除的杂合小鼠自交产生的胚胎【6】，建立了Fto敲除的mESC细胞系。研究人员分析发现Fto敲除会引起mESC中caRNA 的m6A修饰水平上升，并且能够引发基因组水平的转录活性下降与染色质开放程度降低，而敲除的ES细胞在出现细胞增殖减缓的同时，其体内和体外分化能力都会出现不同程度的缺陷。测序结果表明Fto敲除后repeat RNAs，特别是LINE1 RNA上的m6A水平显著上升；同时，染色质相关LINE1 RNA ，尤其是m6A修饰高丰度的LINE1亚群 的RNA水平显著下降。通过进一步解析RNA降解与新生RNA的情况，研究人员发现mESC中Fto敲除引发LINE1 RNA的降解加速，同时引发了广泛的LINE1 RNA合成速率下降。有趣的是转录活性的降低伴随了LINE1 RNA位点附近染色质修饰H3K4Me3和H3K27Ac的下降以及H3K9Me3的上升，同时相关区域的染色质开放程度明显下降。这与已报道的染色质相关RNA上m6A能够介导RNA降解【1】以及招募SETDB1等表观因子建立异染色质【3, 4】的模型相符。
图片
图1. FTO调控LINE1 RNA表达和附近染色质状态以及对LINE1-containing基因表达的顺式调控
之前的研究表明LINE1 RNA可以招募NCL-KAP1蛋白并反式调控（trans-regulation）类2细胞（2C-like）相关基因与逆转座子的抑制和rRNA合成的活跃【7, 8】。在Fto敲除的mESCs中，研究者在观测到LINE1 RNA下降的同时，也观测到了多个2C相关基因和逆转座子的上调。此外，团队在mESC中NEXT复合物的研究中发现，内含子中的LINE1 RNA丰度与宿主基因的表达存在正相关。研究团队进一步分析了LINE1附近编码基因的转录本丰度，转录活性以及表观修饰变化。结果表明在Fto敲除后，大部分包含表达降低的LINE1 RNA的编码基因（down-LINE1-containing genes）的表达也明显受到抑制，并且这些基因的转录活性以及活跃转录组蛋白修饰下降，抑制性H3K9me3水平上升，表明ES细胞内可能存在FTO-LINE1 RNA轴的顺式调控（cis-regulation）。在mESC中大约有1400个基因的表达呈现上述规律，而这些基因大多与ESC分化、转录调控和发育相关，这可能对应了FTO敲除ES细胞的分化缺陷以及纯合敲除小鼠的出生率下降。
为了验证FTO对LINE1 RNA的调控以及FTO-LINE1 RNA轴对基因表达顺式和反式调控是否依赖LINE1 RNA上m6A的擦除实现，研究者设计了dCas13b-FTO与特异性靶标的sgRNA，并将它们转入Fto敲除细胞系中，定点擦除特定LINE1族群的m6A修饰。结果发现LINE1上m6A修饰的擦除不仅能够挽救LINE1 RNA的表达、促进促进染色质的开放，也能修复2C基因的过度激活以及down-LINE1-containing基因的转录抑制。
除了mESCs，研究团队发现在小鼠和人类组织中， FTO的表达和LINE1 RNA的m6A甲基化水平负相关，并与LINE1 RNA的表达正相关。与mESCs类似，在FTO高表达的小鼠脑组织中（包括小脑、海马体以及神经干细胞），Fto的敲除导致LINE1 RNA上m6A水平上升、LINE1 RNA表达下降，同时整体上抑制了染色质的开放，表明这一调控机制可能在发育个体和正常组织细胞中广泛存在。
在小鼠的生殖发育中，包括LINE1在内的逆转座子存在阶段性的特异表达模式，并被认为深度参与了精子与卵子的分化成熟与早期胚胎的发育调控。研究团队在对于Fto敲除小鼠的表型分析中发现，Fto纯合敲除的雌鼠存在严重的生育缺陷，其与野生型交配后，产仔数显著少于野生型，并且幼崽出生一天内就发生死亡，这些结果都表明母源缺乏FTO会引发严重的发育障碍。研究人员进一步分析发现Fto敲除后四周龄小鼠的GV期（germinal vesicle）卵母细胞数目明显下降，并且NSN状态比例偏高，染色质整体开放程度下降，同时LINE1 RNA的丰度显著低于野生型。Fto敲除小鼠在超排卵处理后的排卵数目不稳定，且MII中核型不规整等纺锤体异常情况显著增高，与已报道的GV中注射L1Orf1p dsRNA诱发的卵子发育异常有一定程度的类似。
研究人员通过活精注射，获取了父母源分别（FtoP-/M+和FtoP+/M-）或同时（FtoP-/M-）敲除Fto的胚胎，并将其移植入假孕母鼠的子宫，分析FTO缺乏对胚胎发育的影响。结果发现母源缺乏FTO会引发胚胎着床率降低以及胚胎存活率降低，其中父母源双缺失配子产生的胚胎着床率最低，并且胎儿基本无法存活。通过相对于囊胚阶段的正常胚胎与双缺失胚胎（FtoP-/M-vs FtoP+/M+），父母源Fto双敲除的小鼠胚胎中LINE1 RNA的表达水平偏低，LINE1反式调控的2C基因与逆转座子显著上调，LINE1顺式调控的编码基因转录活性下降。与细胞中的验证实验类似，研究团队在胚胎中构建了基于CRISPR-dCas13b的LINE1 RNA位点特异性m6A擦除系统，并将该系统应用于父母源FTO双缺失的胚胎中。结果表明，通过定点清除LINE1 RNA上的m6A修饰，不仅能够显著提高LINE1 RNA的表达水平，促进囊胚中整体染色质的开放，还可以抑制2C基因与逆转座子活性，提高down-LINE1-containing基因表达。这些结果都表明FTO-LINE1 RNA轴的顺式和反式调控在早期胚胎发育中同样发挥了重要的作用。
图2. FTO参与卵发育与早期胚胎中LINE1 RNA及下游基因的调控
总之，这项工作鉴定了LINE1 RNA m6A是FTO在mESCs里和小鼠发育过程中主要的功能相关底物，FTO通过m6A去甲基化调控染色质相关LINE1 RNA的表达并调节附近位点染色质修饰水平和染色质状态，并影响LINE1的顺式与反式调控下游转录本的表达。此外，贾桂芳/何川/宋宝安教授团队利用过表达FTO使水稻和马铃薯增产50%，其分子机制可能也与植物里repeat RNA的m6A去甲基化和染色质调控相关【9】，提示了repeat RNA的m6A去甲基化可能对不同物种体系内的表观系统都具有重要调控功能。
芝加哥大学魏江博博士、余贤斌博士，同济大学博士生杨磊、刘雪莲为本文的共同第一作者。芝加哥大学何川教授，同济大学高绍荣教授、高亚威教授为本文的共同通讯作者。浙江大学李学坤教授、南京医科大学黄伯贤副研究员和北京大学刘君研究员也参与了这一工作。该工作得到实验室其他成员和合作团队的大力支持。高绍荣、高亚威团队研究得到了科技部、国家自然科学基金委、以及上海市科委等项目的支持。
作者简介
何川，芝加哥大学化学系终身教授、John T. Wilson Distinguished Service讲席教授。2013年何川教授当选为霍华德休斯医学研究院（HHMI）研究员，是当年唯一入选的华人科学家。
何川教授是RNA表观遗传学开创者。研究兴趣涉及化学生物学、核酸化学和生物学、遗传学、细胞生物学、生物无机化学、 结构生物学、微生物学以及基因组学。表征和研究原核生物及真核生物中DNA及RNA去甲基修复酶的结构及性质。研究和证明多种临床感染性病原体中的全局性调控蛋白的调控机理. 研究和开发小分子药物。金属蛋白调控机理研究与金属蛋白进化
高绍荣，同济大学生命科学与技术学院教授、院长，国家杰出青年科学基金获得者、教育部“长江学者”特聘教授、中组部“万人计划”领军人才、国家基金委创新研究群体学术带头人、科技部“干细胞及转化研究”重点研发计划项目负责人。先后获得国家自然科学二等奖、“周光召基金会杰出青年基础科学奖”“谈家桢生命科学创新奖”和“药明康德生命化学研究奖”等奖项。于中国科学院动物研究所获得理学博士学位，1998-2005年先后在美国、英国从事博士后研究。长期从事哺乳动物早期胚胎发育和体细胞重编程表观调控机制研究，是国际上首次证明诱导多能干细胞即iPS细胞真正多能性的两个实验室之一，研究成果曾入选世界十大医学突破和中国生命科学十大进展。在包括Nature,Science, Nature Genetics, Cell Stem Cell,Nature Cell Biology等国际权威学术期刊发表论文百余篇。
高亚威，同济大学，博士生导师。主要从事发育、转分化、核移植和诱导重编程等过程的表观调控机制研究。2013年与陈嘉瑜博士合作在cell stem cell上发表封面文章揭示了DNA甲基化与羟甲基化介导的表观遗传重编程的分子机制，该论文被评为年度十佳论文。通过建立和完善多种微量测序技术，开展了包括早期胚胎组蛋白修饰图谱的测定和核移植胚胎重编程机制等方面的研究，成果之一发表于Nature。近五年，以第一作者和通讯作者在Nature，Cell stem cell，Nature Cell Biology，Cell Reports等一流刊物上发表论文，入选国家第三批“万人计划”青年拔尖人才，上海市晨光计划，青年科学启明星计划，中国科协“青年人才托举工程”等人才项目。
如有侵权，请联系本站删除！
